The role and significance of tumor necrosis factor-α in malignant tumor
-
摘要:
肿瘤坏死因子-α(TNF-α)是一种主要由体内单核巨噬细胞产生的炎症因子,可以直接杀伤肿瘤细胞,在生理剂量下对正常细胞几乎没有毒性作用。TNF-α通过多种机制在肿瘤细胞的增殖、侵袭、转移及凋亡等过程中发挥重要作用,其既可以诱导肿瘤细胞凋亡,又可以促进肿瘤细胞的生长和侵袭。本文阐述TNF-α与恶性肿瘤相关的信号途径和TNF-α在恶性肿瘤中的双重作用及其在肿瘤治疗方面的应用现状,旨在为临床开发TNF-α相关抗癌药物提供新思路。
Abstract:Tumor necrosis factor-α(TNF-α) is an inflammatory factor mainly produced by mononuclear macrophages in the body, which can directly kill tumor cells and has almost no toxic effect on normal cells at physiological doses. TNF-α plays an important role in various stages of tumor development, such as tumor cell proliferation, invasion, metastasis and apoptosis, through a variety of mechanisms. The factor not only promotes the apoptosis of tumor cell, but also promotes the growth and invasion of tumor cells. In this paper, the signaling pathways related to TNF-α in malignant tumors and its dual roles in malignant tumors and application in tumor treatment were elaborated. These findings may provide new ideas for the clinical development of anti-cancer drugs related to TNF-α.
-
Keywords:
- tumor necrosis factor-α /
- tumor necrosis factor receptor /
- signaling pathways /
- mechanism /
- malignant tumor /
- treat
-
复发性流产是妇产科常见疾病,包括生化妊娠,其在育龄女性中的发病率约为5%, 且呈逐渐升高趋势[1-3]。随着自然流产次数的增多,复发性流产的发生风险也会随之升高。引发复发性流产的原因较多,常见原因包括子宫发育不良、感染、精神紧张等。60%~70%患者的发病原因不明[4-5]。复发性流产会导致妊娠结局变差,影响患者的心理健康。抗凝治疗是该病的首选疗法。阿司匹林为常用抗凝药,可有效抑制血栓形成,且能改善炎性浸润,但单用阿司匹林效果欠佳[6-7]。低分子肝素钙对改善血栓前状态有较好的临床疗效[8]。本研究探讨低分子肝素钙联合小剂量阿司匹林在复发性流产患者中的应用效果,现报告如下。
1. 资料与方法
1.1 一般资料
选取2021年1月—2023年9月本院妇产科收治的180例复发性流产患者为研究对象,按照随机数表法分成对照组与观察组,每组90例。对照组年龄20~44岁,平均(30.88±4.47)岁; 体质量52~75 kg, 平均(58.26±4.58) kg; 流产次数2~5次,平均(3.46±0.90)次。观察组年龄20~45岁,平均(30.92±4.43)岁; 体质量52~75 kg, 平均(58.30±4.55) kg; 流产次数2~5次,平均(3.51±0.87)次。2组上述资料比较,差异无统计学意义(P>0.05)。本研究已获得医院伦理委员会审批(2021-TZFY-008-01)。
纳入标准: ①年龄20~45岁者; ②经临床检查证实,满足《复发性流产抗血栓药物治疗中国专家共识》[9]中复发性流产的诊断规定者; ③夫妻双方染色体核型正常; ④患者或家属对研究知晓,自愿加入。排除标准: ①血常规、凝血功能障碍者; ②生殖道感染或畸形者; ③主要脏器疾病者; ④对本研究药物具有禁忌证者; ⑤感染性疾病者; ⑥癌症者; ⑦瘢痕子宫者; ⑧带器宫内妊娠者; ⑨精神病、意识障碍者。
1.2 方法
2组均于备孕前3个月至妊娠12周服用叶酸片(江西制药,国药准字H36020872), 0.4 g/次, 1次/d; 确认为宫内妊娠后,肌注绒毛膜促性素(Merck Serono S. p. A., 注册证号S20110045) 1 000 U/次, 1次/d, 用药1~2周; 肌注黄体酮注射液(昆药集团,国药准字H53020916), 20 mg/次, 1次/d, 用药至妊娠10周后改为口服黄体酮胶囊(浙江仙琚,国药准字H20041902), 100 mg/次,2次/d, 用药至妊娠12周。口服维生素E片(上海新黄河,国药准字H31021028), 100 mg/次, 3次/d, 用药至妊娠20周。对照组给予小剂量阿司匹林治疗: 口服阿司匹林片(哈药集团,国药准字H23021185), 0.75 g/次, 1次/d, 用药至妊娠20周。观察组给予低分子肝素钙联合小剂量阿司匹林治疗: 经脐周皮下注射低分子肝素钙注射液(深圳赛保尔,国药准字H20060190), 3 000 IU/次(0.6 mL), 1次/d, 用药至妊娠20周; 小剂量阿司匹林用药方法同对照组。2组用药期间,每周检测1次凝血功能、血小板计数等,出现异常则酌情减少药量或停药,保胎失败则终止妊娠。2组均随访至终止妊娠。
1.3 观察指标
血栓前状态: 纤溶酶原激活抑制剂-1(PAI-1)、组织型纤溶酶原激活物(t-PA)、抗凝血酶Ⅲ(AT-Ⅲ)、蛋白S(PS), 于治疗前、妊娠20周晨起空腹采血,分别应用酶联免疫吸附法、显色底物法、凝固法进行检测。
凝血功能: 凝血酶原时间(PT)、凝血酶时间(TT)、活化部分凝血活酶时间(APTT)、纤维蛋白原(FIB)、血小板计数(PLT), 于治疗前、妊娠20周晨起空腹采血,应用全自动血凝分析仪进行检测。
激素水平: 绒毛膜促性腺激素(HCG)、雌二醇(E2)、孕酮(P),于治疗前、妊娠20周晨起空腹采血,应用生化分析仪进行检测。
妊娠结局: 流产、早产死胎、早产活婴、足月分娩,早产活婴、足月分娩视为保胎成功,计算保胎成功率。
不良反应: 观察2组不良反应发生情况,计算不良反应总发生率。
1.4 统计学分析
采用SPSS 22.0软件进行数据分析,符合正态分布的计量资料以(x±s)表示,行t检验,计数资料以[n(%)]表示,行χ2检验。P<0.05为差异有统计学意义。
2. 结果
2.1 血栓前状态比较
治疗后, 2组PAI-1、t-PA降低, AT-Ⅲ、PS升高,且观察组PAI-1、t-PA低于对照组, AT-Ⅲ、PS均高于对照组,差异有统计学意义(P<0.05)。见表 1。
表 1 血栓前状态比较(x±s)指标 时点 对照组(n=90) 观察组(n=90) PAI-1/(μg/L) 治疗前 42.46±7.65 42.49±7.63 妊娠20周 26.15±5.37* 20.83±4.22*# t-PA/(μg/L) 治疗前 13.16±1.97 13.20±1.94 妊娠20周 11.06±1.12* 10.48±0.92*# AT-Ⅲ/% 治疗前 82.20±7.51 82.25±7.48 妊娠20周 98.01±8.35* 107.78±9.21*# PS/% 治疗前 83.94±10.34 83.99±10.31 妊娠20周 90.92±11.21* 98.64±12.04*# PAI-1: 纤溶酶原激活抑制剂-1;
t-PA: 组织型纤溶酶原激活物; AT-Ⅲ: 抗凝血酶Ⅲ; PS: 蛋白S。
与治疗前比较, *P<0.05; 与对照组比较, #P<0.05。2.2 凝血功能比较
治疗后, 2组PT、TT、APTT升高, FIB、PLT降低,且观察组PT、TT、APTT高于对照组, FIB、PLT低于对照组,差异有统计学意义(P<0.05)。见表 2。
表 2 凝血功能比较(x±s)指标 时点 对照组(n=90) 观察组(n=90) PT/s 治疗前 10.73±1.67 10.77±1.63 妊娠20周 11.48±1.75* 12.57±1.81*# TT/s 治疗前 14.27±1.23 14.30±1.25 妊娠20周 15.62±1.50* 16.48±1.56*# APTT/s 治疗前 25.34±4.15 25.31±4.18 妊娠20周 26.72±4.52* 28.45±4.77*# FIB/(g/L) 治疗前 4.55±0.52 4.57±0.50 妊娠20周 3.98±0.44* 3.52±0.40*# PLT/(×109/L) 治疗前 204.23±24.57 204.30±24.51 妊娠20周 179.34±18.93* 160.40±18.23*# PT: 凝血酶原时间; TT: 凝血酶时间;
APTT: 活化部分凝血活酶时间;
FIB: 纤维蛋白原; PLT: 血小板计数。
与治疗前比较, *P<0.05; 与对照组比较, #P<0.05。2.3 激素水平比较
治疗后, 2组HCG、E2、P升高,且观察组高于对照组,差异有统计学意义(P<0.05)。见表 3。
表 3 激素水平比较(x±s)组别 HCG/(IU/L) E2/(ng/L) P/(μg/L) 治疗前 妊娠20周 治疗前 妊娠20周 治疗前 妊娠20周 对照组(n=90) 992.43±101.74 6 452.87±734.23* 365.83±39.75 414.76±33.40* 8.94±2.17 22.63±2.49* 观察组(n=90) 990.84±105.82 6 873.28±790.40*# 364.59±40.17 460.68±38.37*# 8.76±2.21 28.55±3.04*# HCG: 绒毛膜促性腺激素; E2: 雌二醇; P: 孕酮。与治疗前比较, *P<0.05; 与对照组比较, #P<0.05。 2.4 妊娠结局比较
观察组保胎成功率高于对照组,差异有统计学意义(P<0.05)。见表 4。
表 4 妊娠结局比较[n(%)]组别 流产 早产死胎 早产活婴 足月分娩 保胎成功 对照组(n=90) 18(20.00) 7(7.78) 10(11.11) 55(61.11) 65(72.22) 观察组(n=90) 9(10.00) 2(2.22) 15(16.67) 64(71.11) 79(87.78)* 与对照组比较, *P<0.05。 2.5 不良反应比较
2组不良反应总发生率比较,差异无统计学意义(P>0.05)。见表 5。
表 5 不良反应比较[n(%)]组别 皮下瘀斑 牙龈出血 胃肠道反应 血小板减少 合计 对照组(n=90) 2(2.22) 1(1.11) 2(2.22) 1(1.11) 6(6.67) 观察组(n=90) 2(2.22) 1(1.11) 1(1.11) 0 4(4.44) 3. 讨论
复发性流产是自然流产的形式之一,多数患者胚胎着床后初期终止发育,导致流产[10]。随着工作与生活压力的增加,女性复发性流产的发生率呈逐渐升高的发展趋势。复发性流产可导致妊娠失败、长期不育或永久性不育,还会影响夫妻关系、婆媳关系及家庭和睦。因此,对该病进行早期诊断、治疗非常重要。复发性流产的发病机制非常复杂,可能与多种因素有关,其中血栓形成和凝血功能异常在复发性流产的发病中起重要作用。
阿司匹林可降低血小板环氧酶活性,预防血栓形成[11-13], 纠正异常子宫血流灌注,改善胎盘血液循环[14]。动物实验研究[15-16]发现,阿司匹林过量使用有致畸风险,但阿司匹林750~1 500 mg/d给药为安全、有效的。故本研究采用小剂量阿司匹林(0.75 g/d)用药。低分子肝素钙是一种抗凝血药物,通过抑制凝血酶的活性,阻止血栓形成。其具有较高的生物利用度和较长的半衰期,因此可以通过皮下注射给药,方便患者使用。低分子肝素钙还可增加AT-Ⅲ的活性,从而进一步增强抗凝血能力,且出血风险小,不易和血小板结合,可有效预防血小板减少[17]。低分子肝素能够达到较好的保胎效果[18-19]。探讨阿司匹林与低分子肝素联合用药的效果具有重要意义[20-21]。
血栓前状态通过影响胎盘血供,导致胎儿缺血、缺氧,甚至停育,最终影响妊娠结局。低分子肝素钙和小剂量阿司匹林的联用可以产生协同效应,从而更好地改善复发性流产患者的血栓前状态和凝血功能。本研究显示,观察组治疗后的PAI-1、t-PA均显著低于对照组,且AT-Ⅲ、PS均显著高于对照组,提示观察组患者的血栓前状态得到了更好的调节,血栓形成的风险较低,分析原因与低分子肝素钙具有抑制血栓形成作用有直接关系。妊娠后,凝血时间会缩短,且呈高凝状态,以防产后出血,但若高凝状态异常且持续时间过长,则易引发血栓,导致胚胎缺氧、缺血,因此改善患者的凝血功能非常有必要。本研究中,观察组治疗后的PT、TT、APTT显著较高,且FIB、PLT显著较低,提示观察组患者的凝血功能改善效果更好,说明联合治疗能够更有效调节患者的凝血功能。
此外,低分子肝素钙联合小剂量阿司匹林还可以调节激素水平。在妊娠过程中,激素平衡对于维持妊娠的稳定性非常重要。HCG是诊断早期妊娠的主要参考依据。在妊娠初期, HCG的水平会迅速上升,并在妊娠8~11周达到峰值,然后逐渐下降。E2和P是由卵巢产生的激素,在妊娠过程中起着重要调节作用。随着妊娠黄体和胎盘的形成, E2和P的表达水平逐渐升高。E2主要由卵泡细胞产生,在妊娠早期起着促进子宫内膜增厚和胚胎着床的作用。P主要由黄体和胎盘产生,在妊娠早期起着维持妊娠的作用,有助于子宫内膜的稳定和胚胎的发育。复发性流产患者由于滋养层萎缩,其激素水平会显著低于正常妊娠孕妇。本研究显示,观察组治疗后的HCG、E2、P显著更高,提示观察组患者的激素水平较高,说明联合治疗可以更好调节患者的激素水平,提高妊娠成功率。观察组保胎成功率显著高于对照组,进一步证实联合治疗的应用优势及安全性。这可能与低分子肝素钙联合小剂量阿司匹林可改善患者的凝血功能、调节激素水平以及预防血栓形成有关。在治疗复发性流产时,低分子肝素钙联合小剂量阿司匹林的优势不仅在于其治疗效果,还在于其安全性。本研究结果显示,观察组和对照组的不良反应发生率相近,说明低分子肝素钙联合小剂量阿司匹林治疗的安全性较好。但不同患者对药物的反应可能存在差异,因此需密切监测患者的情况,并根据其具体情况进行调整。
综上所述,低分子肝素钙联合小剂量阿司匹林治疗复发性流产患者具有显著的临床效果,可有效改善患者的血栓前状态、凝血功能和激素水平,提高妊娠结局和保胎成功率,且具有较好的安全性。但本研究存在一定的不足,本研究病例数较少,结果可能存在偏倚,因此仍需扩大样本量以进一步验证。
-
[1] ATRETKHANY K S N, GOGOLEVA V S, DRUTSKAYA M S, et al. Distinct modes of TNF signaling through its two receptors in health and disease[J]. J Leukoc Biol, 2020, 107(6): 893-905. doi: 10.1002/JLB.2MR0120-510R
[2] BALKWILL F. Tumour necrosis factor and cancer[J]. Nat Rev Cancer, 2009, 9(5): 361-371. doi: 10.1038/nrc2628
[3] SINGH N, BABY D, RAJGURU J P, et al. Inflammation and cancer[J]. Ann Afr Med, 2019, 18(3): 121-126. doi: 10.4103/aam.aam_56_18
[4] CIEBIERA M, WŁODARCZYK M, ZGLICZYNSKA M, et al. The role of tumor necrosis factor α in the biology of uterine fibroids and the related symptoms[J]. Int J Mol Sci, 2018, 19(12): 3869. doi: 10.3390/ijms19123869
[5] PROBERT L. TNF and its receptors in the CNS: the essential, the desirable and the deleterious effects[J]. Neuroscience, 2015, 302: 2-22. doi: 10.1016/j.neuroscience.2015.06.038
[6] KALLIOLIAS G D, IVASHKIV L B. TNF biology, pathogenic mechanisms and emerging therapeutic strategies[J]. Nat Rev Rheumatol, 2016, 12(1): 49-62. doi: 10.1038/nrrheum.2015.169
[7] QU R Z, CHEN X M, HU J, et al. Ghrelin protects against contact dermatitis and psoriasiform skin inflammation by antagonizing TNF-α/NF-κB signaling pathways[J]. Sci Rep, 2019, 9(1): 1348. doi: 10.1038/s41598-018-38174-2
[8] BAKR A G, EL-BAHRAWY A H, TAHA H H, et al. Diosmin enhances the anti-angiogenic activity of sildenafil and pentoxifylline against hepatopulmonary syndrome via regulation of TNF-α/VEGF, IGF-1/PI3K/AKT, and FGF-1/ANG-2 signaling pathways[J]. Eur J Pharmacol, 2020, 873: 173008. doi: 10.1016/j.ejphar.2020.173008
[9] LI P, GAN Y B, XU Y, et al. The inflammatory cytokine TNF-α promotes the premature senescence of rat nucleus pulposus cells via the PI3K/Akt signaling pathway[J]. Sci Rep, 2017, 7: 42938. doi: 10.1038/srep42938
[10] GARCIA-ECHEVERRIA C, SELLERS W R. Drug discovery approaches targeting the PI3K/Akt pathway in cancer[J]. Oncogene, 2008, 27(41): 5511-5526. doi: 10.1038/onc.2008.246
[11] BOYE K, GROTTERØD I, AASHEIM H C, et al. Activation of NF-kappaB by extracellular S100A4: analysis of signal transduction mechanisms and identification of target genes[J]. Int J Cancer, 2008, 123(6): 1301-1310. doi: 10.1002/ijc.23617
[12] 王丽, 王毅楠, 吴英良, 等. 在无血清条件下TNFα通过Pkn1和MAPK-Erk通路对FBJ细胞生长的调控作用[J]. 沈阳药科大学学报, 2009, 26(2): 145-151. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-SYYD200902018.htm [13] PARK H B, BAEK K H. E3 ligases and deubiquitinating enzymes regulating the MAPK signaling pathway in cancers[J]. Biochim Biophys Acta Rev Cancer, 2022, 1877(3): 188736. doi: 10.1016/j.bbcan.2022.188736
[14] 高世勇, 李丹. 肿瘤坏死因子与癌症相关研究进展[J]. 中国药理学通报, 2020, 36(9): 1209-1213. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-YAOL202009006.htm [15] BENOOT T, PICCIONI E, DE RIDDER K, et al. TNFα and immune checkpoint inhibition: friend or foe for lung cancer[J]. Int J Mol Sci, 2021, 22(16): 8691. doi: 10.3390/ijms22168691
[16] LIU Y M, GAO Y, LIN T. Expression of interleukin-1 (IL-1), IL-6, and tumor necrosis factor-α (TNF-α) in non-small cell lung cancer and its relationship with the occurrence and prognosis of cancer pain[J]. Ann Palliat Med, 2021, 10(12): 12759-12766. doi: 10.21037/apm-21-3471
[17] YEHIA R, SCHAALAN M, ABDALLAH D M, et al. Impact of TNF-alpha gene polymorphisms on pancreatic and non-small cell lung cancer-induced cachexia in adult egyptian patients: a focus on pathogenic trajectories[J]. Front Oncol, 2021, 11: 783231. doi: 10.3389/fonc.2021.783231
[18] LIN A Q, ZHANG H M, MENG H, et al. TNF-alpha pathway alternation predicts survival of immune checkpoint inhibitors in non-small cell lung cancer[J]. Front Immunol, 2021, 12: 667875. doi: 10.3389/fimmu.2021.667875
[19] 张雪, 董晓平, 管雅喆, 等. 女性乳腺癌流行病学趋势及危险因素研究进展[J]. 肿瘤防治研究, 2021, 48(1): 87-92. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-ZLFY202101017.htm [20] MERCOGLIANO M F, BRUNI S, ELIZALDE P V, et al. Tumor necrosis factor alpha blockade: an opportunity to tackle breast cancer[J]. Front Oncol, 2020, 10: 584. doi: 10.3389/fonc.2020.00584
[21] ZHAO Y, NICHOLS J E, VALDEZ R, et al. Tumor necrosis factor-alpha stimulates aromatase gene expression in human adipose stromal cells through use of an activating protein-1 binding site upstream of promoter 1. 4[J]. Mol Endocrinol, 1996, 10(11): 1350-1357.
[22] RIVAS M A, CARNEVALE R P, PROIETTI C J, et al. TNF alpha acting on TNFR1 promotes breast cancer growth via p42/P44 MAPK, JNK, Akt and NF-kappa B-dependent pathways[J]. Exp Cell Res, 2008, 314(3): 509-529. doi: 10.1016/j.yexcr.2007.10.005
[23] NAGY P, FRIEDLÄNDER E, TANNER M, et al. Decreased accessibility and lack of activation of ErbB2 in JIMT-1, a herceptin-resistant, MUC4-expressing breast cancer cell line[J]. Cancer Res, 2005, 65(2): 473-482. doi: 10.1158/0008-5472.473.65.2
[24] TANIGUCHI K, KARIN M. NF-κB, inflammation, immunity and cancer: coming of age[J]. Nat Rev Immunol, 2018, 18(5): 309-324. doi: 10.1038/nri.2017.142
[25] RINGELHAN M, PFISTER D, O'CONNOR T, et al. The immunology of hepatocellular carcinoma[J]. Nat Immunol, 2018, 19(3): 222-232. doi: 10.1038/s41590-018-0044-z
[26] MICHEAU O, TSCHOPP J. Induction of TNF receptor I-mediated apoptosis via two sequential signaling complexes[J]. Cell, 2003, 114(2): 181-190. doi: 10.1016/S0092-8674(03)00521-X
[27] EHLKEN H, KRISHNA-SUBRAMANIAN S, OCHOA-CALLEJERO L, et al. Death receptor-independent FADD signalling triggers hepatitis and hepatocellular carcinoma in mice with liver parenchymal cell-specific NEMO knockout[J]. Cell Death Differ, 2014, 21(11): 1721-1732. doi: 10.1038/cdd.2014.83
[28] VAN T M, POLYKRATIS A, STRAUB B K, et al. Kinase-independent functions of RIPK1 regulate hepatocyte survival and liver carcinogenesis[J]. J Clin Invest, 2017, 127(7): 2662-2677. doi: 10.1172/JCI92508
[29] KNIGHT B, YEOH G C, HUSK K L, et al. Impaired preneoplastic changes and liver tumor formation in tumor necrosis factor receptor type 1 knockout mice[J]. J Exp Med, 2000, 192(12): 1809-1818. doi: 10.1084/jem.192.12.1809
[30] TIEGS G, HORST A K. TNF in the liver: targeting a central player in inflammation[J]. Semin Immunopathol, 2022, 44(4): 445-459. doi: 10.1007/s00281-022-00910-2
[31] TAN W L, LUO X, LI W D, et al. TNF-α is a potential therapeutic target to overcome sorafenib resistance in hepatocellular carcinoma[J]. EBioMedicine, 2019, 40: 446-456. doi: 10.1016/j.ebiom.2018.12.047
[32] SUGANUMA M, WATANABE T, SUEOKA E, et al. Role of TNF-α-inducing protein secreted by Helicobacter pylori as a tumor promoter in gastric cancer and emerging preventive strategies[J]. Toxins, 2021, 13(3): 181. doi: 10.3390/toxins13030181
[33] ZHAO Y, WANG J W, TANAKA T, et al. Association between TNF-α and IL-1β genotypes vs Helicobacter pylori infection in Indonesia[J]. World J Gastroenterol, 2013, 19(46): 8758-8763. doi: 10.3748/wjg.v19.i46.8758
[34] 许清, 周彬. 调强放疗在晚期胃癌根治术后淋巴结转移患者中的临床效果及对炎症因子、免疫功能的影响研究[J]. 川北医学院学报, 2019, 34(6): 756-759. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-NOTH201906026.htm [35] CUI X Y, ZHANG H, CAO A N, et al. Cytokine TNF-α promotes invasion and metastasis of gastric cancer by down-regulating Pentraxin3[J]. J Cancer, 2020, 11(7): 1800-1807. doi: 10.7150/jca.39562
[36] HU H, YIN J, WANG M, et al. GX1 targeting delivery of rmhTNFα evaluated using multimodality imaging[J]. Int J Pharm, 2014, 461(1/2): 181-191.
[37] LU X M, CHENG C, WANG G B, et al. Synergistic enhancement of cancer therapy using a combination of fusion protein MG7-scFv/SEB and tumor necrosis factor alpha[J]. Protein Pept Lett, 2013, 20(4): 467-472.
[38] SIEGEL R L, MILLER K D, FUCHS H E, et al. Cancer statistics, 2021[J]. CA Cancer J Clin, 2021, 71(1): 7-33. doi: 10.3322/caac.21654
[39] TIETZ A B, MALO A, DIEBOLD J, et al. Gene deletion of MK2 inhibits TNF-alpha and IL-6 and protects against cerulein-induced pancreatitis[J]. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol, 2006, 290(6): G1298-G1306. doi: 10.1152/ajpgi.00530.2005
[40] TIEDJE C, RONKINA N, TEHRANI M, et al. The p38/MK2-driven exchange between tristetraprolin and HuR regulates AU-rich element-dependent translation[J]. PLoS Genet, 2012, 8(9): e1002977. doi: 10.1371/journal.pgen.1002977
[41] 余钧辉, 孙学军, 郑见宝, 等. TNF-α通过Wnt/β-catenin信号通路促进结肠癌细胞的增殖[J]. 西安交通大学学报: 医学版, 2018, 39(4): 504-508. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-XAYX201804013.htm [42] LI H, ZHONG A J, LI S, et al. The integrated pathway of TGFβ/Snail with TNF-α/NF-κB may facilitate the tumor-stroma interaction in the EMT process and colorectal cancer prognosis[J]. Sci Rep, 2017, 7(1): 4915. doi: 10.1038/s41598-017-05280-6
[43] SHEN J, LI Z J, LI L F, et al. Vascular-targeted TNF-α and IFN-γ inhibits orthotopic colorectal tumor growth[J]. J Transl Med, 2016, 14(1): 187. doi: 10.1186/s12967-016-0944-3
[44] LI K, SHI M L, QIN S K. Current status and study progress of recombinant human endostatin in cancer treatment[J]. Oncol Ther, 2018, 6(1): 21-43. doi: 10.1007/s40487-017-0055-1
[45] TUNG Y T, HUANG P W, CHOU Y C, et al. Lung tumorigenesis induced by human vascular endothelial growth factor (hVEGF)-A165 overexpression in transgenic mice and amelioration of tumor formation by miR-16[J]. Oncotarget, 2015, 6(12): 10222-10238. doi: 10.18632/oncotarget.3390
[46] 秦叔逵, 马军, 李进, 等. 重组改构人肿瘤坏死因子治疗恶性胸、腹腔积液的临床应用专家共识[J]. 临床肿瘤学杂志, 2018, 23(1): 67-72. https://www.cnki.com.cn/Article/CJFDTOTAL-LCZL201801014.htm -
期刊类型引用(3)
1. 蒋春芳,吴晓萍,沈云士. 门诊处方前置审核系统对生殖中心用药合理化分析. 医药前沿. 2025(03): 129-133 . 百度学术
2. 郭秀荣. 低分子肝素钠联合阿司匹林治疗复发性流产的安全性评价. 中外医疗. 2024(33): 27-30 . 百度学术
3. 刘娟,马汝婵. 烯丙雌醇联合低分子肝素钠治疗对复发性流产患者子宫血流灌注和凝血功能的影响. 智慧健康. 2024(35): 63-66 . 百度学术
其他类型引用(0)
计量
- 文章访问数: 1281
- HTML全文浏览量: 872
- PDF下载量: 141
- 被引次数: 3